摘要:
目的 探讨异体糖尿病大鼠来源脂肪干细胞(ASC)是否对糖尿病大鼠创面有促愈作用及其机制. 方法 (1)取56只12~ 16周龄雄性Wistar大鼠,按随机数字表法(分组方法下同)分为糖尿病组和健康组,每组28只.健康组大鼠不进行任何处理;糖尿病组大鼠于腹腔一次性注射10 g/L链脲佐菌素60 mg/kg,建立糖尿病模型.按随机数字表法取健康组和糖尿病组大鼠各4只,取腹股沟处脂肪组织,培养纯化ASC以获得健康大鼠来源ASC(下称nASC)和糖尿病大鼠来源ASC(下称dASC).取第3代nASC和dASC(样本数均为3),流式细胞仪检测细胞表面分化抗原CD105、CD31、CD34及CD44的阳性表达率,确定纯度.(2)取健康组和糖尿病组剩余大鼠各24只,每只大鼠背部制作3个直径12 mm的圆形全层皮肤缺损创面.伤后即刻,分别于每只大鼠3个创面及其创缘皮下注射磷酸盐缓冲液(PBS)、2×107个/mL的nASC、2 × 10 7个/mL的dASC各0.5 mL.伤后1、3、7、12 d,按随机数字表法每组各取6只大鼠计算创面面积;取创面组织行苏木精-伊红染色,观察创面组织学形态.(3)对人ASC(hASC)进行传代培养,采用第4~7代细胞进行后续实验.将hASC分为7组,每组12个样本.空白对照组细胞用间充质干细胞培养液培养,单纯晚期糖基化终末产物(AGE)组、单纯蛋白组、单纯高糖组、单纯高渗透压组、AGE高糖联合组、蛋白高渗透压联合组细胞分别用加入终质量浓度100 mg/L AGE、100 mg/L牛血清白蛋白(BSA)、28 mmol/L D-葡萄糖、28 mmol/L甘露醇、100 mg/L AGE+ 28 mmol/L D-葡萄糖、100 mg/L BSA+ 28 mmol/L甘露醇的间充质干细胞培养液培养.培养2h及2、4、6d,采用细胞计数试剂盒8法检测细胞增殖情况.(4)取hASC,分为空白对照组、单纯AGE组、单纯高糖组、AGE高糖联合组,每组12个样本,同实验(3)相应组处理.培养0、2、4、6d,流式细胞仪检测细胞表面分化抗原CD105、CD44、CD45阳性表达率以确定其稳态.(5)取hASC,分为AGE高糖联合组和蛋白高渗透压联合组,每组9个样本,同实验(3)相应组处理.培养2、4、6d,采用花青素3-链霉亲和素双抗体夹心技术检测细胞内蛋白表达水平.对数据进行析因设计方差分析、LSD检验及Bonferroni校正. 结果 (1)nASC、dASC的CD44阳性表达率均>96%,CD31、CD34阳性表达率低,CD105阳性表达率为40%左右,基本符合纯度要求.(2)2组大鼠组内3种方式处理创面伤后1d面积均相近(P>0.05).与组内PBS处理创面的(0.682 1±0.078 9)、(0.3143±0.1137)、(0.064 3±0.002 1)cm2比较,健康组大鼠nASC处理创面面积于伤后3、7、12d显著缩小[(0.4641±0.0926)、(0.2239±0.0727)、(0.034 3±0.012 5)cm2,P<0.05];健康组大鼠dASC处理创面面积于伤后3、12 d显著缩小[(0.514 1 ±0.124 1)、(0.043 7 ±0.032 8)cm2,P <0.05],伤后7d无明显改变[(0.274 2±0.062 5)cm2,P >0.05].与组内dASC处理创面比较,健康组大鼠nASC处理创面面积于伤后3、7d显著缩小(P<0.05),伤后12 d无明显改变(P>0.05).与组内PBS处理创面的(0.853 5±0.204 8)、(0.670 5 ±0.164 8)、(0.131 4±0.0744)cm2比较,糖尿病组大鼠nASC处理创面面积于伤后3、7、12 d显著缩小[(0.633 4 ±0.132 5)、(0.331 8±0.023 5)、(0.074 2±0.003 8)cm2,P <0.05];糖尿病组大鼠dASC处理创面面积于伤后3d显著缩小[(0.773 6 ±0.182 2)cm2,P <0.05],伤后7、12 d无明显改变[(0.510 6 ±0.192 2)、(0.1144±0.003 1)cm2,P >0.05].与组内dASC处理创面比较,糖尿病组大鼠nASC处理创面面积伤后3、7d无明显改变(P>0.05),伤后12 d显著缩小(P<0.05).伤后1d各组大鼠组内3种方式处理创面组织学形态无明显差异.伤后3d,2组大鼠nASC、dASC处理创面都有少量微血管形成,PBS处理创面几乎未见微血管形成.伤后7d,2组大鼠nASC、dASC处理创面内可见较多小血管及成纤维细胞(Fb),PBS处理创面小血管及Fb略少.伤后12 d,2组大鼠nASC、dASC处理创面已基本被上皮组织覆盖;健康组大鼠PBS处理创面内肉芽组织不明显,糖尿病组大鼠PBS处理创面未全部上皮化.(3)与空白对照组比较,单纯AGE组hASC细胞量于培养2、4、6d显著减少(P<0.05),单纯高糖组hASC细胞量于培养2、4d显著增加(P<0.05),AGE高糖联合组hASC细胞量于培养4、6d时显著减少(P<0.05).(4)与组内培养4d比较,空白对照组、单纯AGE组、AGE高糖联合组hASC培养6d时CD105阳性表达率明显下降(P<0.05).各组hASC各时间点CD44阳性表达率均>95%,CD45阳性表达率均<2%.(5)共有7种蛋白检测值位于可信区间.2组hASC中碱性成纤维细胞生长因子、基质金属蛋白酶组织抑制剂1表达水平均随培养时间延长呈上升趋势.AGE高糖联合组hASC中人单核细胞趋化蛋白1(MCP-1)表达水平随培养时间的延长呈上升趋势,生长相关性癌基因(GRO)表达水平则在培养6d时显著高于组内培养4d时(P<0.05);蛋白高渗透压联合组hASC中MCP-1、GRO表达水平均随培养时间延长呈下降趋势.蛋白高渗透压联合组hASC中卵泡抑素表达水平在培养4d时明显下降,AGE高糖联合组hASC中卵泡抑素表达水平则在培养6d时显著低于组内培养4d时(P<0.05).蛋白高渗透压联合组hASC中血管内皮生长因子(VEGF)表达水平随培养时间延长逐渐下降,AGE高糖联合组hASC中VEGF表达水平在培养4d时较组内培养2d时显著下降(P<0.05).蛋白高渗透压联合组hASC中尿激酶型纤溶酶原激活剂受体表达水平在培养6d时较组内培养4d时显著升高(P<0.05),且显著高于AGE高糖联合组培养6d时(P<0.05).结论 nASC和dASC对大鼠单纯缺损伤创面都有促愈作用,但dASC对合并糖尿病大鼠创面的促愈作用不显著,这可能与高糖及AGE干预可抑制ASC增殖并影响其稳态及分泌功能有关.