以转 AID 基因细胞和 AID 基因敲减细胞为研究对象,旨在探讨5-氮-2'-脱氧胞苷(5-Aza-2'-deoxycytidine,5-Aza-CdR)对其细胞形态、细胞周期、相关基因表达及其基因启动子区甲基化状态变化的影响。此外,还分析了整体基因组去甲基化和位点特异性去甲基化之间存在的差别,探讨提高体细胞重编程效率的方法及其作用机制。通过 Real-time PCR、BSP(Bisulfite Sequencing PCR)、Western blotting 和流式细胞术等技术分析了5-Aza-CdR 对转 AID 基因细胞和 AID 基因敲减细胞的影响。结果表明,5-Aza-CdR 对转 AID 基因细胞的影响存在明显的剂量效应,浓度为4μmol/L 时,具有明显的细胞毒性,大量细胞死亡(P<0.05)。当使用处理浓度为1-3μmol/L 时,细胞形态发生改变,细胞增殖被抑制。核型分析显示,3μmol/L 浓度组处理就可以导致转 AID基因细胞出现异常核型。使用1μmol/L 浓度处理细胞,明显增加了表达报告基因细胞的数量,细胞 AID 和 SOX2的表达量都有所提高,并且 SOX2基因启动子区的 DNA 甲基化水平也有所下降。5-Aza-CdR 处理 AID 基因敲减细胞后,OCT4和 SOX2的表达量较对照组明显升高,而 NANOG 却没有发生变化。结果显示,5-Aza-CdR 处理转 AID 基因细胞可改变细胞形态、细胞周期和报告基因的表达,5-Aza-CdR 处理后基因组整体去甲基化和 AID 基因的位点特异性去甲基化协同作用于体细胞重编程。